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TAQ DNA POLYMERASEN

BESTELL-INFORMATION

TAQ DNA POLYMERASE (5 U/µl)

Best.-Nr.

Units

10x Reaktionspuffer
50 mM MgCl2

Preis (EUR)

# Taq 100
100 1 x 1.8 ml     
1.5 ml      

18,50

# Taq 500
500

2 x 1.8 ml     

1.5 ml    74,00

RED TAQ DNA POLYMERASE (1 U/µl)

Best.-Nr.

Units

10x Reaktionspuffer
50 mM MgCl2

Preis (EUR)

# Red 100
100 1 x 1.8 ml     
1.5 ml      

21,00

# Red 500
500

2 x 1.8 ml     

1.5 ml       84,00


BESCHREIBUNG

Die Taq DNA Polymerase ist eine hoch gereinigte, rekombinante, thermostabile DNA Polymerase. Sie wird aus E. coli isoliert, das den Vektor für das DNA Polymerase Gen aus Thermus aquaticus trägt. Das Enzym erreicht seine höchste Prozessivität bei 74°C und katalysiert die Polymerisierung von Nukleotiden der DNA in der 5'3'-Richtung in Anwesenheit von Magnesiumionen. Sie besitzt eine hohe thermische Stabilität und kann auch längeren Inkubationszeiten bei erhöhten Temperaturen (95°C) standhalten.

Die Red Taq DNA Polymerase enthält einen inerten roten Marker-Farbstoff, so dass eine Identifikation der Reaktionen, zu denen das Enzym zugegeben wurde, möglich ist. Der Farbstoff hat keine nachteiligen Auswirkungen auf die PCR.

Unit Definition

Ein Unit ist die Enzymmenge, die benötigt wird, um 10 nmol dNTP in 30 Minuten bei 74°C in eine säureunlösliche Form umzuwandeln.

Enzym-Lagerungspuffer

20 mM Tris/HCl (pH 8.0 bei 25°C), 30 mM KCl, 0.1 mM DTT, 0.5% Tween 20, 50% (v/v) Glycerol.

10x Reaktionspuffer

670 mM Tris/HCl (pH 8.8 bei 25°C), 166 mM (NH4)2SO4, 4.5% Triton®-X-100, 2 mg/ml Gelatine.

Mg2+-Lösung

50 mM MgCl2 (empfohlene finale Konzentration: 14 mM).

Endodeoxyribonuklease Assay

Keine Umwandlung von kovalent geschlossener zirkulärer DNA in genickte DNA nachweisbar. (Reaktionsbedingungen: Inkubation von 10 units Taq DNA Polymerase mit 1 µg verdauter DNA bzw. 1µl pBR322 DNA in 50 µl Taq Puffer mit KCL und 1.5 mM MgCl2 über 4 h bei 37°C bzw. 70°C).

Exodeoxyribonuklease Assay

Kein Abbau (smearing) von Lambda DNA/HindIII Fragmenten nachweisbar.(Reaktionsbedingungen: Inkubation von 10 units Taq DNA Polymerase mit 1 µg verdauter DNA bzw. 1µl verdauter DNA in 50 µl Taq Puffer mit KCL und 1.5 mM MgCl2 für 4 h bei 37°C bzw. 70°C).

Ribonuklease Assay

Kein Abbau der 28S/18S Banden nachweisbar. (Reaktionsbedingungen: Inkubation von 10 units Taq DNA Polymerase mit 1 µg Gesamt-RNA in 50 µl Taq Puffer mit KCL und 1.5 mM MgCl2 für 4 h bei 37°C bzw. 70°C).

Funktioneller Assay

0.1 ng Lambda DNA wurde mit spezifischen Primern amplifiziert, so dass eine deutliche 500 bp Bande nachweisbar ist.

BASIS PROTOKOLL

Mischen Sie alle Komponenten vor der Verwendung vorsichtig, um Konzentrationsgradienten im Röhrchen zu vermeiden und setzen Sie den Mix auf Eis in geeigneten PCR-Röhrchen an. Kein Vortexen oder Zentrifugieren. Pipettieren Sie die folgenden Komponenten in ein PCR-Reaktionsgefäß und geben Sie die entsprechende Menge Wasser hinzu um ein Endvolumen von 50 µl zu erreichen:

Komponente

Volumen (in µL)

Finale Konzentration

10x Reaktionspuffer

5

1x

50 mM MgCl2 Lösung

1.5

1.5 mM

12.5 mM dNTP-Mastermix

1

250 µM

Vorwärts-Primer

variabel

0.2 – 1 µM

Rückwärts-Primer

variabel

0.2 – 1 µM

Template DNA

variabel

< 1 µg

Red Taq DNA Polymerase (1 U/µl)

1.0 – 2.5

1 – 2.5 U

Taq DNA Polymerase (5 U/µl)

0.2 – 0.5

1 – 2.5 U

2x destilliertes, steriles Wasser

Zugabe auf Endvolumen von 50


Endvolumen

50



CYCLING PROGRAMM

Schritt

Temperatur (in °C)

Dauer

Zyklen

Enzym Aktivierung

94

5 min

1

Denaturierung

94

30 sec

23 – 35

Annealing

53*

45 sec

23 – 35

Extension

72

30 sec/kb

23 – 35

Finale Extension

72

30 sec/kb

1

*: Wählen Sie die Temperätur ungefähr 5°C unter der Tm der Primer.


TIPPS UND HINWEISE

  • Vortexen Sie die MgCl2-Lösung vor der Verwendung gründlich.
  • Mischen Sie alle Komponenten vorsichtig vor der Verwendung.
  • Mixen Sie die Komponenten nach dem Pipettieren durch vorsichtiges Schwenken.
  • Halten Sie die Ansätze so lange wie möglich auf Eis.

Die Reaktionsbedingungen (Inkubationstemperatur und –dauer, Konzentrationen der Template-DNA, der Primer, der Magnesium-Ionen und des Enzyms) sind abhängig von dem verwendeten Template und der Primer. Die optimale Mg2+-Konzentration liegt bei 1 4 mM und muss empirisch ermittelt werden. Für die meisten Anwendungen ist eine Konzentration von 1.5 mM Mg2+ ideal. Für anspruchsvollere Amplifikationen genomischer DNA, bei denen höhere Mg2+-Konzentrationen (2 3 mM) vorliegen müssen, ist dem Set eine separate 50 mM MgCl2-Lösung beigefügt.


OPTIMIERUNG DER MgCl2 KONZENTRATION IM REAKTIONSANSATZ

Finale Konzentration an MgCl2 in 50 µl Reaktionsvolumen

Zugabe 50 mM MgCl2 Lösung

1.5 mM

1.5 µl

1.75 mM

1.75 µl

2.0 mM

2.0 µl

2.5 mM

2.5 µl

3.0 mM

3.0 µl

4.0 mM

4.0 µl


LAGERUNG

Lagerung bei -20°C für 24 Monate.

WARNUNG

Nur für Forschungszwecke. Nicht geeignet für die Diagnose von Krankheiten bei Mensch und Tier. Keine interne oder externe Anwendung am Menschen oder Tier.